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生物資訊

帶你深入了解 qPCR的實驗原理、檢測步驟和常見問題,助你輕松拿捏qPCR!

作者:admin 來源:本站 發布時間: 2024-07-23 14:57  瀏覽次數:
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01、什么是qPCR

定量聚合酶鏈式反應(qPCR),作為分子生物學領域的一項革命性技術,憑借其高精確度和準確性,已對生物醫學研究產生了深遠的影響。

作為經典PCR技術的的高級形式,qPCR,也被稱為實時熒光定量PCR,利用了新合成DNA鏈中特定染料的熒光信號增強,或是針對特定DNA序列的探針釋放的熒光片段,來監測DNA的互補過程。這一技術的核心優勢在于,它能將DNA的檢測與擴增過程相結合,即時為科研人員提供重要的數據信息。

qPCR和傳統PCR的基本操作原理相似,即通過DNA聚合酶催化DNA的補充,將新的標記序列添加到短的單鏈DNA片段上,即引物的3'-OH斷裂。以這一系列反應在配備有熒光檢測系統的專用熱循環儀中進行。通過測量熒光信號強度,將其與預設的閾值或標準曲線相比較,從而實現DNA含量相對或絕對定量分析。

02、qPCR應用領域

qPCR憑借其實時監測、高靈敏度與特異性,能夠實現對遺傳物質極為精準的測量,并在多個領域中具有不可估量的應用價值。

1. 基因表達譜分析:qPCR技術能夠定量特定基因在不同條件下的表達水平,為揭示基因功能、調控機制及疾病發生發展過程中的基因表達變化提供依據。

2. 病原體檢測:qPCR能夠快速、準確地檢測出微量的病原體DNA或RNA,為疾病的早期診斷、疫情監控及治療效果評估提供支持。

3. 遺傳變異研究:利用qPCR技術,科研人員能夠檢測并分析遺傳序列中的單核苷酸多態性(SNP)、插入/缺失變異等遺傳變異,為遺傳病篩查、個性化醫療及藥物研發等領域的研究提供信息。

 

4. 環境監測:qPCR能夠高效檢測水體、土壤及空氣中微生物群落的變化,評估環境質量,監測污染源的生態影響,為環境保護和治理提供依據。

5. 臨床診斷:qPCR已成為多種疾病診斷、預后評估及治療效果監測的重要手段。通過檢測患者體內特定基因或病原體的表達水平,醫生能夠制定更加精準的治療方案。

03、qPCR 的工作原理

qPCR反應的核心開始于一個混合體系,該體系包含了DNA聚合酶、脫氧核苷酸三磷酸酯(dNTPs,作為DNA合成的原料)、特定設計的引物(用于識別并啟動DNA鏈的延伸)、熒光染料或報告探針(用于實時監測DNA擴增過程),以及待檢測的模板DNA。

04、qPCR 的關鍵步驟

變性階段在高溫條件下(常規設定為94°C至98°C之間),雙鏈DNA解開成單鏈DNA。

退火階段:在溫度稍低的環境中(大約50°C至70°C之間),使設計的引物與模板DNA中的目標區域相結合,形成引物-模板DNA復合物。

延伸階段:DNA聚合酶的催化作用下,溫度調至酶活性的范圍(通常在68°C至72°C之間),酶沿著引物結合的起點,以模板DNA為模板,逐個添加核苷酸,產生兩條互補的 DNA 鏈,形成雙鏈DNA。

定量完成階段:在每一輪DNA補充時,通過熒光計測量并記錄這些熒光信號,以做定量分析。

05、qPCR 檢測方法

常見的qPCR檢測方法包括DNA插層染料、水解探針、分子信標和LNA探針。

06、qPCR的引物設計注意事項

引物的設計長度推薦在15至30個堿基對之間,這樣有助于70至200個堿基對的目標序列進行高效互補。

為確保PCR反應的順利進行,所選用的正向和反向引物應具有相近的熔解溫度(Tm),理想范圍設定在60°C至65°C之間。

引物的3'端應充足GC,可以提升引物與模板DNA結合的效率和提高熔解溫度。引物的GC含量應控制在40%至60%之間,以達到最佳的擴增梯度、穩定性和擴增效率。

退火溫度通常建議比引物的Tm值低約5°C,這樣做是為了減少非極化的可能性。

07、qPCR常見問題及解決方法

問題1.qPCR 擴增效率低

問題原因:

試劑與反應體系因素:如試劑降解、過期或保存不當導致的活性降低。或者加液量不足或成分比例不當而導致效率低。

引物與標記設計問題:引物和熒光標記(或探針)的設計存在缺陷。包括引物與模板DNA的結合力不夠強、引物間形成二聚體、產物長度過長以及未能充分優化反應條件。

解決方法:

保證所有qPCR試劑質量良好,嚴格按照說明書儲存和使用。確保加液量準確無誤,以減少操作誤差。

利用文獻資源或專業設計軟件重新設計引物和標記。以確保產物長度控制在80到150堿基對之間,同時,根據引物的特性調整和優化PCR反應條件。

 

  問題2:結果出現假陽性現象

問題原因:

試劑與反應體系因素:可能試劑或模板受到污染,此外,反應體系中鎂離子濃度過高或引物濃度過高等原因導致,也可能產生假陽性。

設計問題:引物設計存在缺陷,不恰當的引物序列可能導致引物間形成二聚體或發夾結構,影響PCR后續的反應的進行,最終表現為假陽性結果。

解決方法:

嚴格遵守實驗室操作規程,人群小心操作試劑或模板的污染。

一旦發現污染情況,應立即排查并處理,必要時更換受污染的試劑或者模板。

在引物設計完成后,用專業的軟件進行驗證,確保避免引物之間的二聚體和發夾結構的形成。

 

 

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